有4%的甲醛浓度。?甲醛是最常用的固定液,其优点是对固定组织的穿透力强(4h穿透2.7mm;12h为5mm).?2性甲醛是人体组织、实验动物组织常用的固定液,效果优于甲醛。?构成:甲醛原液120ml 蒸馏水880ml 磷酸二氢钠4g 磷酸氢二钠13g,使PH达7.0.Р3酒精-乙醇易被氧化为乙醛、乙酸。用于固定时以80%-95%的浓度为好。具有硬化、固定、脱水等作用,渗透力较弱。70%的酒精可较久保存组织。? 注意:50%以上浓度的酒精可溶解脂肪及类脂质,又能溶解血红蛋白及其他色素,慎用为好。Р三、取材?在具体实验过程中,我们不可能将所有的病理组织都做成切片进行观察,所以,为达到正确观察或诊断的目的,必须采集适量的病例组织,这不仅要求标本材料要尽可能新鲜,而且要有一定的数量和质量,根据需要确定取材的部位和块数。Р切取组织时,应用锋利的刀、剪,刀刃宜薄,足够长。一般标本切取的组织块厚以0.2~0.3cm为宜,对于冰冻切片,取材组织块略厚度可达0.3~0.4cm,也可根据情况略作调整。若过厚则固定不好,组织结构不佳,过薄则切片张数有限,有漏掉病变部位的可能性。一般来讲,常规组织病理染色,组织块大小以1.5cm×1.5cm×0.2~0.3cm为宜Р用于免疫组织化学染色的组织块,以1cm×1cm×0.2cm为好;用于电镜观察的组织块要小,以1mm×1mm×1mm为宜。?动物标本在取材前要尽量避免动物过度疲劳,迅速将动物杀死。实验室中多采用麻醉法,动物麻醉后即可根据实验的目的要求进行取材。Р四、脱水、透明、浸蜡、包埋?固定好的标本需流水冲洗12-24h。?1.脱水:组织固定好后,在透明、浸蜡前应先将组织中的固定剂以流水冲洗数小时,由于水不能与二甲苯及石蜡相结合,所以需先脱去组织中的水分。?常用脱水剂:酒精、丙酮、正丁醇等,但酒精既能脱水又可与透明剂二甲苯互溶,使组织硬化。故常用酒精。
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