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微丝观察

上传者:梦&殇 |  格式:ppt  |  页数:13 |  大小:493KB

文档介绍
胞骨架中的蛋白质却不被破坏,经固定和考马斯亮蓝(非特异性蛋白质染料)染色后,胞质背景着色弱,微管等蛋白结构在光镜下无法分辨,在光镜下观察到主要是由微丝组成的应力纤维。? 应力纤维由平行排列的微丝组成,体外培养的贴壁细胞应力纤维尤为发达,形态长而直,常与细胞长轴平行并贯穿细胞全长。РРРРРРР微丝在细胞内的分布特征РРРР[实验用品]Р器具:CO2恒温培养箱、倒置显微镜、超净工作台、低速离心机、普通光学显微镜、移液器、恒温箱、镊子、培养皿、载玻片、盖玻片、吸水纸。?材料:盖玻片培养的成纤维细胞?试剂:6 mmol/L PBS(pH 6.5)、1%TritonX-100溶液、M-缓冲液、3%戊二醛固定液、0.2%考马斯亮蓝染液、DMEM培养液。РРРР[实验步骤]Р1. 培养 在成纤维细胞进行传代培养时,将已消毒的盖玻片涂上多聚赖氨酸,放入培养皿中,于37℃、5%CO2的温箱中生长24h~48h。?2. 染色处理?(1)取材 取出铺有细胞的盖玻片,放入小培养皿中(正面向上),用PBS洗3次,洗去表面的培养液。?(2)抽提 吸管吸弃PBS,加入1% Triton X-100液4-5滴(刚好覆盖盖玻片表面),室温处理10minРРРР(3)稳定吸管吸弃Triton X-100,立即用M-缓冲液轻轻地洗涤3次。? ?(4)固定 略晾干,在3%戊二醛液中固定10min,再以 PBS液洗3次,洗去固定液。? ?(5)染色 滴加3-5滴0.2%考马斯亮兰染液染色? 10 min,然后小心的用自来水漂洗。??(6)观察 留取少量水分封片于载玻片,吸水? 纸吸去多余的水。光镜下观察临时装片。РРРР[实验结果]Р光镜观察,微丝聚集成的应力纤维束被染成蓝色,成纤维细胞多数有突起,微丝沿突起规则排列。

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